干細(xì)胞在細(xì)胞治療、組織工程和再生醫(yī)學(xué)以及制藥和生物技術(shù)應(yīng)用方面具有巨大前景。它們具有自我更新的能力,并能夠根據(jù)分離來源分化成特定的細(xì)胞類型。然而,干細(xì)胞在臨床應(yīng)用中的使用需要高質(zhì)量和大量的細(xì)胞,這需要大規(guī)模擴(kuò)增干細(xì)胞。傳統(tǒng)的細(xì)胞維持和擴(kuò)增方法依賴于使用平面塑料培養(yǎng)板和異種培養(yǎng)基的2D培養(yǎng)技術(shù),這些方法的擴(kuò)增有限,細(xì)胞在長期傳代后往往會失去克隆和分化能力。干細(xì)胞的3D擴(kuò)增新方法強(qiáng)調(diào)3D細(xì)胞生長以模擬體內(nèi)環(huán)境。本文將簡要介紹干細(xì)胞3D擴(kuò)增系統(tǒng)中微載體、生物反應(yīng)器以及培養(yǎng)基等的上游工藝的最新進(jìn)展以及策略選擇。
微載體的選擇
由于通常從天然來源獲得的干細(xì)胞數(shù)量較少,GMP級干細(xì)胞培養(yǎng)面臨的主要挑戰(zhàn)之一是選擇最佳擴(kuò)增系統(tǒng)。該系統(tǒng)必須使用無異種培養(yǎng)基、生長因子和添加物擴(kuò)增未分化狀態(tài)的干細(xì)胞。3D生物反應(yīng)器是克服靜態(tài)培養(yǎng)限制的可行選擇,因?yàn)樗鼈兲峁┝艘粋€(gè)可放大的系統(tǒng),其中可以監(jiān)控和控制操作因素。
關(guān)于培養(yǎng)系統(tǒng)的首要選擇要素是生物反應(yīng)器的類型,必須考慮擴(kuò)增細(xì)胞的最終應(yīng)用。例如,攪拌罐生物反應(yīng)器是相對簡單的培養(yǎng)系統(tǒng),由一個(gè)帶有攪拌槳的容器組成,攪拌槳攪拌內(nèi)部物質(zhì)以提供均勻的培養(yǎng)液。此類培養(yǎng)系統(tǒng)已成功測試了在無異種條件下擴(kuò)增不同類型的干細(xì)胞,包括間充質(zhì)干細(xì)胞 (MSC)、誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞 (iPSC) 和胚胎干細(xì)胞(ESC)。使用這些系統(tǒng)時(shí)需要關(guān)注產(chǎn)生的剪切應(yīng)力,可能會損壞對剪切敏感的細(xì)胞,通過控制攪拌槳的形狀和攪拌速度,可以最大限度地減少這一問題。
該類生物反應(yīng)器系統(tǒng)中必須監(jiān)測和控制的另一個(gè)重要參數(shù)是氧飽和度。在不同 O2濃度下培養(yǎng)的干細(xì)胞可能在細(xì)胞增殖、活力和分化能力方面表現(xiàn)出顯著差異。一些研究測試了在低氧飽和度(約 5%)下培養(yǎng)iPSC和 ESC,在缺氧條件下觀察到細(xì)胞從有氧到無氧途徑的顯著代謝變化。但這種情況導(dǎo)致乳酸濃度升高,培養(yǎng)基的 pH 值從中性變?yōu)樗嵝?。?dāng)在 ESC培養(yǎng)中使用 30% 的氧飽和度時(shí),實(shí)現(xiàn)了更高的代謝和細(xì)胞生長率。
生物反應(yīng)器的設(shè)計(jì)對于臨床級干細(xì)胞的擴(kuò)增至關(guān)重要,并且必須完全符合GMP法規(guī),而生物反應(yīng)器容器特性(例如材料、尺寸和形狀)是影響細(xì)胞生產(chǎn)并最終影響生物工藝成本的關(guān)鍵參數(shù)。生物反應(yīng)器的材料和設(shè)計(jì)應(yīng)便于清潔和生產(chǎn)步驟,從而防止任何污染的可能性。在這方面,一些生物反應(yīng)器系統(tǒng)已經(jīng)開發(fā)出使用一次性裝置作為避免清潔過程和降低污染風(fēng)險(xiǎn)的新策略。
上述系統(tǒng)可以與微載體結(jié)合,從而將系統(tǒng)的特性與其融合在一起,所以,未來的趨勢可能集中在探索這些具有不同微載體特性的生物反應(yīng)器系統(tǒng),以針對特定的干細(xì)胞類型,最大限度地提高細(xì)胞產(chǎn)量,同時(shí)保持其活力和多能性。
維持和擴(kuò)增干細(xì)胞所需的培養(yǎng)基、生長因子、細(xì)胞因子和其它添加物是上游生物工藝中的關(guān)鍵元素。培養(yǎng)基配方中包含異種或未定義的化合物以及對細(xì)胞功能所涉及的多種分子和細(xì)胞機(jī)制的不理解是需要解決的主要問題。培養(yǎng)基和添加物中的異種成分具有潛在危險(xiǎn),因?yàn)樗鼈兛赡芎锌蓚鞑ソo培養(yǎng)細(xì)胞的致病因子,從而阻礙其用于醫(yī)療應(yīng)用。例如,胎牛血清 (FBS) 是一種低分子量和高分子量生物分子的異種復(fù)合混合物,傳統(tǒng)上被包含在培養(yǎng)基配方中以促進(jìn)細(xì)胞生長。然而,眾所周知,它們的生產(chǎn)批次間含量存在顯著差異,從而改變了生物分子的批次間濃度和工藝的可重復(fù)性。這在GMP級干細(xì)胞培養(yǎng)中必須完全避免,因?yàn)樗赡芎胁涣家蛩?,如:?nèi)毒素、支原體、病毒污染物和朊病毒蛋白。
干細(xì)胞培養(yǎng)配方中經(jīng)常添加促進(jìn)未分化狀態(tài)細(xì)胞增殖的細(xì)胞因子和生長因子。這些添加物通常來自異種來源,因此它們在臨床干細(xì)胞培養(yǎng)中的使用也受到阻礙。但目前已經(jīng)有很多無異種材料的開發(fā)和干細(xì)胞培養(yǎng)的應(yīng)用,而有關(guān)使用無異種培養(yǎng)基的報(bào)道已證實(shí)了細(xì)胞的擴(kuò)增能力及其在整個(gè)培養(yǎng)過程中保持分化潛能的能力。
細(xì)胞分離
細(xì)胞與微載體分離是直接影響細(xì)胞活力的重要步驟。目前,已經(jīng)開發(fā)了不同的分離策略,這些策略與基于微載體的生物工藝完全兼容。其中,基于蛋白水解酶的方法最為常用。傳統(tǒng)上,胰腺衍生的牛和豬胰蛋白酶是廣泛用于細(xì)胞分離的酶。盡管這些酶很有效,但它們的動物來源使其無法用于醫(yī)療環(huán)境,必須探索無異種替代品。重組胰蛋白酶樣酶,如 TrypLE 和 TrypZean是解決胰蛋白酶使用不便的辦法。雖然這些酶在不同的生物體中表達(dá),但它們在不同的比較研究中表現(xiàn)出與胰蛋白酶相似的干細(xì)胞分離活性。
另一個(gè)需要考慮的因素是酶孵育時(shí)間對細(xì)胞表達(dá)標(biāo)志物的影響。如研究顯示,胰蛋白酶在 30 分鐘時(shí)會降低多種細(xì)胞表面表達(dá)標(biāo)志物,而 TrypLE 不會影響任何一種。另有研究顯示,MSC過度暴露于 TrypLE 酶(60 分鐘)可顯著降低多能性表達(dá)標(biāo)志物。酶孵育時(shí)間是成功實(shí)現(xiàn)細(xì)胞分離而不影響細(xì)胞完整性和活力的重要參數(shù)。雖然較長的酶孵育時(shí)間與細(xì)胞損傷和細(xì)胞死亡有關(guān),但由于蛋白質(zhì)鍵的不完全斷裂,短時(shí)間會阻礙細(xì)胞分離。因此,必須嚴(yán)格規(guī)范細(xì)胞與酶的接觸時(shí)間,以防止細(xì)胞活力及其特性的下降。為了克服這種時(shí)間上的挑戰(zhàn),研究將胰蛋白酶孵育與攪拌相結(jié)合,這減少了酶孵育時(shí)間并減少了細(xì)胞對酶活性的過度暴露。其它的替代方案是使用刺激響應(yīng)性材料來克服酶促分離的缺點(diǎn)。這些材料可以與外部刺激發(fā)生反應(yīng),例如溫度、pH 值或電解質(zhì)濃度的變化,從而導(dǎo)致其尺寸/大小、結(jié)構(gòu)、溶解度或分子間相互作用發(fā)生改變。從這個(gè)意義上說,目前的趨勢是尋找簡化分離過程并減少或最終消除酶使用的新材料。用于藥物遞送系統(tǒng)、納米顆粒和組織工程應(yīng)用的新型材料可以推廣到微載體的制造。
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C.McKee, G.R.Chaudhry, Advances and challenges in stem cell culture. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2017.
A.Ebrahimian, M.Schalk, et al., Seed Train Optimization in Microcarrier-Based Cell Culture Post In Situ Cell Detachment through Scale-Down Hybrid Modeling. Bioengineering, 2024.
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